Il y a eu une forte augmentation dans l'utilisation de cannabis-contenir des produits au cours des dernières années. C'est en grande partie dû à la légalisation d'une utilité médicale et oisive de cannabis dans plusieurs conditions d'USA. Les composantes des cannabis comprennent le tetrahydrocannabinol (THC), le cannabidiol (CBD), et le cannabinol (BCN). Une méthode par laquelle le cannabis s'analyse est par GC-MS.
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Pourquoi y a-t-il un besoin d'analyser CBD et THC ?
Le cannabis est l'un des médicaments les plus très utilisés au monde et la disponibilité des concentrations variées des ingrédients des cannabis a effectué le composé de procédé de production. On l'a également noté qu'une des composantes principales des cannabis, THC, a augmenté dans la concentration à la centrale de cannabis au fil du temps.
Bien que le cannabis soit censé avoir la toxicité inférieure, les études récentes prouvent que le cannabis et ses ingrédients peuvent potentiellement être un facteur de risque pour des symptômes psychotiques. Ainsi, il y a un besoin d'examiner analytiquement les concentrations de ses ingrédients actifs de différentes places et à temps.
Quelles méthodes sont employées pour chromatographie gazeuse/spectrométrie de masse ?
Solvants
Les solvants variés employés pour traiter le cannabis comprennent le n-hexane, l'acétaldéhyde, le chloroforme, la vanilline, l'acide chlorhydrique, l'alcool, l'éther éthylique, le méthylène, l'acétone, et l'acétate éthylique. Tous ces réactifs sont de pente analytique et peuvent être promptement achetés.
Extraction des composés
Dans une étude, l'extraction de CBD et de THC a été exécutée par 25 imbibants g de la centrale de cannabis dans 500 ml de n-hexane pendant 10 jours. Le mélange a été alors soniqué et le solvant a été vaporisé de sorte que l'échantillon ait pu s'analyser.
Préparation des échantillons
Le procédé de chromatographie gazeuse/spectrométrie de masse (GC-MS) exige la préparation des échantillons considérable. Pour faire ainsi, le µL 500 de la solution sont transférés dans une fiole de chromatographie gazeuse de 2 ml. La fiole peut être passionnée dans un bain pendant 12 mn pour se vaporiser et décarboxyler le solvant. Le résidu est alors dissous dans 1,5 ml d'éthanol et secoué avant la soumission à l'analyse de chromatographie gazeuse.
Traitement
Le traitement fait par la combinaison de la chromatographie gazeuse et de la spectrométrie de masse. Un tube capillaire est utilisé en chromatographie gazeuse, un procédé dans lequel les cotes de fléau (longueur, diamètre, et épaisseur) et les propriétés de phase définissent. Les affinités différentes des molécules pour la phase stationnaire du fléau tient compte de la séparation des molécules pendant qu'elles se déplacent le long du chromatographe en phase gazeuse.
Basé sur leurs propriétés, ils s'éluent hors du fléau à différentes heures et s'analysent ainsi par le spectromètre de masse à différentes heures. Le spectromètre de masse capte ces molécules, puis ionise, accélère, guide, et trouve différentes molécules basées sur leur masse au rapport de charge.
Utilisée ensemble, la spectrométrie de masse et la chromatographie gazeuse tiennent compte de l'identification d'un composé à un plus de haute résolution qu'analysant l'échantillon individuellement sur l'un ou l'autre de ces méthodes.
Quelles conditions sont nécessaires pour exécuter l'analyse ?
La taille de fléau est de 15 m X 0,25 millimètres, et la phase est 5% diphénylique et dimethylpolysiloxane de 95%. Bien que différents types de fléaux analytiques puissent être employés pour séparer des cannabinoids, les fléaux avec des petits diamètres, des films minces, et des phases stationnaires non polaires sont les plus utilisés généralement. Cependant, les fléaux non polaires manquent de la polarité suffisante pour séparer le cannabidiol et le cannabichromene. En pareil cas, un fléau intermédiaire de polarité, tel que le diphényle de 35% avec des silicones diméthyles de 65%, peut être employé.
Le vecteur est un atome d'hydrogène, et la température est maintenue à 280°C. Les cannabinoids peuvent être séparés en moins de 3 mn utilisant un fléau court et de faible diamètre. Cependant, un fléau large avec un diamètre du µm 530 est parfois dû préféré à une capacité plus élevée d'échantillon ; le régime d'élution avec de tels fléaux serait approximativement 9 mn.
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